今日，據(jù)售后客戶的反饋報告顯示，很多客戶實驗做出的分析有問題，這種現(xiàn)象曾在美國Scripps Research Institute的研究員Geoffrey Chang發(fā)現(xiàn)過，他用來分析實驗數(shù)據(jù)的程序發(fā)生錯誤，因此只能發(fā)表聲明撤回五篇已發(fā)表的論文，包含三篇發(fā)表在Science上的論文。
對此我司現(xiàn)公布實驗試劑導致產(chǎn)品檢驗質量有可能出現(xiàn)的一些問題：
ELISA質量保證是一個復雜的過程，許多重要的環(huán)節(jié)都影響到檢測的質量：
一、方法學的影響
ELISA測定模式包括以下幾種：雙抗體夾心法、間接法、雙抗原夾心法、IgM抗體捕捉法、競爭抑制法，其中競爭抑制法（HBeAb,HBcAb等采用）因受操作時差所引起的不公平競爭等因素的影響，結果重復性較差，質量較難控制。
二、試劑因素
不 同批次的ELISA試劑在制作過程中很難保證質量*一致，即使是通過批批檢的項目其檢測結果也存在差異，因此必須選擇和訂購長批號的試劑，并保證保存條 件。嚴格執(zhí)行這一標準可以避免因試劑批號改變而重新建立質控體系及重新評估試劑的復雜過程，并且能夠保證結果的穩(wěn)定性；對于效期短、使用率低的試劑，應當 小量分裝，每次使用則取分裝部分即可，避免反復凍融造成試劑的失效。
1、避免直接接觸終止液和底物A、B。一旦接觸到這些液體，請盡快用水沖洗。
2、實驗中不要吃喝、抽煙或使用化妝品。
3、不要用嘴吸取試劑盒里的任何成份。
三、樣本因素
標本干擾因素包括內源性干擾因素和外源性干擾因素，前者包括類風濕因子、補體、異嗜性抗體、自身抗體、溶菌酶等，后者包括標本溶血、標本被細菌污染、標本貯存時間過長、標本凝固不全、冷凍標本的反復凍融等。
將 抗原或抗體固定在過程稱為包被（coating）。換言之，包被即是抗原或抗體結合到固相載體表面的過程。蛋白質與聚苯乙烯固相載體是通過物理吸附結合 的，靠的是蛋白質分子結構上的疏水基團與固相載體表面的疏水基團間的作用于。這種物理吸附是非特異性的，受蛋白質的分子量、等電點、濃度等的影響。載體對 不同蛋白質的吸附能力是不相同的，大分子蛋白質較小分子蛋白質通常含有更多的疏水基團，故更易吸附到固相載體表面。IgG對聚苯乙烯等固相具有較強的吸附 力，其聯(lián)結多發(fā)生在Fc段上，抗體結合點暴露于外，因此抗體的包被一般均采用直接吸附法。蛋白質抗原大多也可采用與抗體相似的方法包被。
不易吸附 在聚苯乙烯載體上的非蛋白質抗原可采用特殊的包被方式。例如，在檢測抗DNA抗體時，需用DNA作為包被抗原，而普遍的固相載體一般不能直接與核酸結合。 可將聚苯乙烯板先經(jīng)紫外線照射（例如30W紫外燈，75cm照射12小時），以增加其吸附性能。固相載體先用堿性蛋白質，如聚賴氨酸、魚精蛋白等作預包 被，也可提高核酸的結合力。也可用親和素生物素系統(tǒng)作間接包被，即用親和素先包被載體，然后加入生物素化的DNA，這種包被方法均勻、牢固，已擴大應用于 各種抗原物質的定量測定。
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